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質保3年只換不修，廠家長沙實了個驗儀器制造有限公司
羅氏實時熒光量PCR儀是一類用于核酸擴增與定量分析的高精度檢測設備，集溫控系統、光學檢測系統、軟件分析平臺于一體，可對DNA或cDNA進行定量、相對定量、熔解曲線分析、多重檢測等多種實驗任務。設備在擴增過程中同步采集熒光信號，實現對目標序列的實時監測，適用于科研、教學、醫學檢驗、動植物檢疫、食品與環境監測等實驗場景。其核心優勢在于溫控均一性、光學穩定性、算法可靠性與人機交互易用性，能夠在保證靈敏度與特異性的同時縮短實驗周期、提升數據可重復性。
本說明書面向具備分子生物學基礎與實驗室規范操作能力的人員，包括實驗員、項目負責人與實驗室質量管理人員。初次使用者建議在接受系統培訓或在有經驗人員指導下完成首輪實驗。
儀器在預設的循環程序下完成變性、退火與延伸等階段的溫度切換。熒光探針或染料在擴增反應中與目標序列結合后釋放或增強熒光信號，光學模塊于每一循環或指定周期進行采集，經信號處理與基線校正后生成擴增曲線與Ct/Cq值。通過標準曲線可實現絕對定量，通過ΔΔCt方法可實現相對定量；熔解曲線可用于判定產物特異性與雜合峰風險。
主機與熱循環模塊：提供快速、精準、均勻的溫度控制；支持孔板或管條多規格耗材。
光學檢測模塊：多通道激發與接收，兼容常見熒光染料/探針；具備通道間校正能力。
控制與分析軟件：包含方法編輯、實時監控、數據處理、報告生成、審計追蹤等功能。
附件與耗材：反應板/管、封板膜、校準板、專用工具包等。
文檔與記錄：含操作指南、維護計劃表、質控記錄表與安全須知等模板。
放置位置：穩固臺面，遠離振動、強磁與直射光源；預留散熱空間。
環境條件：建議恒溫恒濕，潔凈、干燥、無腐蝕性氣體；避免粉塵與氣溶膠聚集。
供電要求：獨立穩壓電源與可靠接地；必要時配備UPS以防止意外斷電。
分區管理：核酸提取區、配置區與擴增區獨立設置，單向流動，防止交叉污染。
開箱檢查：核對清單、確認外觀完整、配件齊全；記錄設備編號與初始狀態。
完成溫度與光學校準，設定通道配置；根據實驗方案建立模板方法。
準備陰性、陽性與無模板對照（NTC），必要時加入內參基因。
檢查耗材適配性與潔凈度；確保移液器校準有效。
在軟件中新建項目與樣本列表，明確板位布局、樣本類型與生物學重復。
依據SOP準備反應體系，建議在低溫條件下快速配制并盡量減少開蓋次數。
方法編輯：設置預變性、循環數、退火/延伸溫度與時間；如需多重檢測，合理分配熒光通道并設定采集點。
裝板與封板：確保體積一致、液滴居中無氣泡；使用合適的封板膜并充分壓實。
上機與運行：將板放置于指定位置并校準方向；在軟件中選擇方法與項目后啟動運行。
實時監控：觀察擴增曲線與基線；必要時調整閾值位置但避免運行中頻繁更改。
結束與取板：運行完成后緩慢開蓋，立即封存或轉移產物；做好廢棄物的分類與消毒。
基線與閾值：采用穩定區間進行基線扣除；閾值應落在指數增長區。
標準曲線：使用系列稀釋樣本計算斜率與R2，評估擴增效率與線性范圍。
定量方法：絕對定量依據拷貝數標準品；相對定量建議選取穩定內參并進行ΔΔCt計算。
多重檢測：檢查各通道峰形、交叉干擾與光譜溢出；必要時進行通道間校正。
熔解曲線：單一尖銳峰提示特異性好；多峰或肩峰需復核引物設計與反應條件。
報告輸出：包含樣本信息、方法參數、曲線圖、Ct值表、標準曲線與判讀結論；保留原始數據與審計日志以便追溯。
對照體系：陰性對照應無擴增，NTC用于排查體系污染；陽性對照驗證反應有效性。
重復性：生物學與技術重復并行，評估Ct離散度并計算變異系數。
性能確認：定期復核檢出限、線性范圍與擴增效率；在方法變更或批次更替時重新確認。
文件化管理：保存SOP、原始記錄、變更記錄與定期審核表，確保實驗可追蹤。
試劑分區儲存并標注開啟日期與失效期；低溫保存、避光、防凍融反復。
樣本前處理遵循無RNA/DNA酶污染原則；設專用移液工具與耗材。
使用前混勻與瞬時離心，確保體系均一；對高抑制樣本可考慮稀釋或加入適配添加劑。
病原檢測：選擇特異性強的引物探針，設立嚴格的陰性對照與攜帶者閾值。
基因表達分析：優選表達穩定的內參，進行PCR效率校正與引物擴增區間優化。
拷貝數變異分析：結合標準曲線與參考片段，控制樣本負載量與反應抑制因素。
熔解曲線分型：提升升溫速度與采集密度以分辨微小Tm差異，避免染料飽和效應。
多重體系：控制引物探針濃度平衡，錯峰退火溫度以降低互相競爭與二聚體形成。
例行保養：運行后清潔外殼與托盤，保持光學窗口潔凈干燥；定期檢查散熱通道。
校準周期：按計劃進行溫度與光學復核；記錄校準日期與結果。
耗材管理：使用推薦規格的反應板與封板膜，避免變形導致熱接觸不良。
軟件維護：定期備份數據庫，保留多版本方法文件與審計追蹤。
停機與存放：長期停用前完成全面清潔與干燥，覆蓋防塵罩并保持通風。
Ct值異常升高：檢查樣本降解、反應抑制或移液誤差；確認擴增效率與閾值位置。
無擴增或曲線不規則：核對引物探針有效性、退火溫度與Mg2?濃度；排查引物二聚體。
多峰或雜峰：復核引物特異性與熔解曲線掃描設置；適當提高退火溫度或優化緩沖體系。
通道間漂移：執行光學校準與通道間校正；避免熒光串擾與板位邊緣效應。
重復性差：統一反應體積與裝液順序；控制板位溫度均一性與密封完整性。
軟件報錯：核對方法參數、項目文件與存儲路徑；必要時導出日志以便技術支持判讀。
佩戴實驗室常規防護用品，避免試劑接觸皮膚與黏膜。
對含高風險病原體的樣本，使用相應生物安全等級的設施并進行滅活或密閉操作。
運行中勿開啟熱蓋與光學艙蓋；停機后待溫度降低再取板。
廢棄物分類處理，含核酸染料與化學品的廢液按危廢處置。
采用預混體系減少移液次數；設置裝載順序與時限，降低溫漂與蒸發。
針對復雜基質樣本，進行適度稀釋或加入增強劑；必要時更換核酸提取策略。
建立“方法庫”，將不同目標、不同通道組合的參數沉淀為模板，便于跨項目復用。
持續評估引物探針批間差異，設立入庫驗證指標與替代方案。
每次運行保留項目編號、操作者、日期、批次、方法版本與結果快照；
對異常結果形成偏差報告與糾正措施；
定期匯總關鍵質量指標（擴增效率、R2、Ct離散度、陽性符合率等），用于持續改進。
如何設定閾值？ 選擇指數增長區的平穩段，使陰性對照不越閾，陽性樣本落入線性響應范圍。
多重檢測如何避免串擾？ 選用光譜分離度高的染料組合，平衡引物濃度并進行單通道預驗證。
標準曲線不穩定怎么辦？ 重新配制系列稀釋，確保混勻與瞬時離心；排查移液誤差與吸附損失。
熔解曲線出現肩峰？ 復核引物設計與產物長度，優化退火溫度與升溫速率，必要時更換體系。
反應體積：10–25 μL范圍內保持一致；
循環數：35–45循環視目標拷貝數與背景決定；
退火溫度：依據引物Tm值優化，一般在55–65 ℃范圍微調；
采集策略：末端采集或每循環采集按染料/探針特性選擇；
熔解曲線：65–95 ℃緩慢升溫并高密度采集，利于分辨相近Tm。
本說明書旨在為日常操作與質量管理提供系統化指引。請在規范的實驗條件下開展檢測，嚴格執行分區與防污染要求，做好方法確認與記錄歸檔。通過對溫控、光學、算法與操作流程的協同優化，能夠獲得更穩定的Ct值、更清晰的擴增曲線與更可靠的定量結果，從而支撐高頻次、高通量與高可信度的分子檢測工作。
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